500bp ladder 

M1251/M1252

60次/60次×3

建議上樣量

3-5 μl/次?？筛鶕?jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

500bp ladder已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  1 %瓊脂糖凝膠，

1×TAE，7 V/cm，40 min。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

500bp ladder由10條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定500 bp至5 kb的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為2000 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量，可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為92 ng/μl。

條帶組成（bp）

500、1,000、1,500、2,000、2,500、3,000、3,500、4,000、4,500、5,000

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。

● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。

● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。

● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。
● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

200bp ladder 

M1151/M1152

60次/60次×3

建議上樣量

3-5 μl/次。可根據(jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

200bp ladder已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  1 %瓊脂糖凝膠，

1×TAE，7 V/cm，40 min。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

200bp ladder由12 條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定200 bp至4 kb的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為1000 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量，可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為108 ng/μl。

條帶組成（bp）

200、400、600、800、1,000、1,200、1,400、1,600、1,800、2,000、2,200、4,000

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。

● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。

● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。

● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。
● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

建議上樣量

3-5 μl/次。可根據(jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

100bp ladder已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  1.7 %瓊脂糖凝膠，

0.5×TBE，5 V/cm，1 h。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

100bp ladder由11條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定100 bp至1.5 kb的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為500 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量，可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為100 ng/μl。

條帶組成（bp）

100、200、300、400、500、600、700、800、900、1,000、1,500

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。

● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。

● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。

● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。
● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

50bp ladder

M1041/M1042

60次/60次×3

建議上樣量

3-5 μl/次?？筛鶕?jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

50bp ladder已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  3 %瓊脂糖凝膠，

0.5×TBE，5 V/cm，1 h。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

50bp ladder由8條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定50 bp至500 bp的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為250 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為76 ng/μl。

條帶組成（bp）

50、100、150、200、250、300、400、500

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。

● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。

● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。

● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。

● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

50bp ladder plus

M1051/M1052

60次/60次×3

建議上樣量

3-5 μl/次。可根據(jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

50bp ladder plus已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  3 %瓊脂糖凝膠，

0.5×TBE，5 V/cm，1 h。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

50bp ladder plus由13 條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定50 bp至1 kb的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為250 bp和500 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為128 ng/μl。

條帶組成（bp）

50、100 、150、200、250、300、400、500、600、700、800、900、1,000

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。

● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。

● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。

● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。

● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

20bp ladder

M1021/M1022

60次/60次×3

建議上樣量

3-5 μl/次?？筛鶕?jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

20bp ladder已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  5 %瓊脂糖凝膠，

0.5×TBE，5 V/cm，1 h。

20 cm  10 %聚丙烯酰胺凝膠電泳，

1×TBE，8 V/cm，3 h。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

20bp ladder由13 條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定20 bp至300 bp的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為100 bp和200 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為128 ng/μl。

條帶組成（bp）

60、80、100、120、140、160、180、200、220、240、260、280、300

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。

● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。

● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。

● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。

● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

10bp ladder

M1011/M1012

60次/60次×3

建議上樣量

3-5 μl/次?？筛鶕?jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

10bp ladder已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  5 %瓊脂糖凝膠，

0.5×TBE，5 V/cm，1 h。

20 cm  10 %聚丙烯酰胺凝膠電泳，

1×TBE，8 V/cm，3 h。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

10bp ladder由18條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定80 bp至300 bp的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為100 bp和200 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為168 ng/μl。

條帶組成（bp）

80、90、100、110、120、130、140、150、160、170、180、190、200、220、240、260、280、300

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。

● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。

● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。

● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。

● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

1kb ladder 

M1181/M1182

50次/50次×5

建議上樣量

3-5 μl/次?？筛鶕?jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

1kb ladder已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  1%瓊脂糖凝膠，

1×TAE，7 V/cm，45 min。

保存

常溫保存半年，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

1kb ladder由10條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定500 bp至10 kb的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為2000 bp和5000 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為104 ng/μl。

條帶組成（bp）

500、1,000、1,500、2,000、3,000、4,000、5,000、6,000、8,000、10,000

注意事項(xiàng)
● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。
● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。
● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。
● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。

● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&A

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。

1kb ladder plus

M1191/M1192

60次/60次×3

建議上樣量

3-5 μl/次。可根據(jù)上樣孔大小選擇合適上樣量。

1kb ladder plus已預(yù)混上樣緩沖液，可直接進(jìn)行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  1%瓊脂糖凝膠，

1×TAE，7 V/cm，45 min。

保存

常溫保存3個(gè)月，長(zhǎng)期保存請(qǐng)置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     100 ng/5μl

非指示帶   40 ng/5μl

產(chǎn)品說明

1kb ladder plus由15 條雙鏈線狀DNA片段混合而成，適用于確定100 bp至10 kb的線性雙鏈DNA片段大小，指示帶為500 bp和3000 bp，便于電泳后觀察。每條帶都通過嚴(yán)格的物理定量可用于測(cè)定目的片段的大小和含量。

產(chǎn)品濃度為144 ng/μl。

條帶組成（bp）

100、200、300、400、500、700、1,000、1,500、2,000、3,000、4,000、5,000、6,000、8,000、10,000

注意事項(xiàng)

● 請(qǐng)選擇高品質(zhì)的瓊脂糖，并及時(shí)更換電泳緩沖液。溶膠不充分會(huì)導(dǎo)致因膠濃度不均而出現(xiàn)電泳條帶異常；陳舊的緩沖液離子緩沖能力不足，可能導(dǎo)致Marker條帶泳動(dòng)緩慢，并伴隨彌散現(xiàn)象。
● 膠濃度、電壓、電泳時(shí)間是影響DNA片段分離的主要因素，為獲得最佳電泳分離效果，建議按照東盛推薦的條件進(jìn)行電泳分析。
● 上樣量的多少取決于樣品的濃度與加樣孔的體積大小。由于東盛Marker的濃度較高，通常對(duì)于寬3mm（厚0.75-1mm）的加樣孔，建議上樣2-3 μl，對(duì)于寬5mm（厚0.75-1.5mm）的加樣孔，建議上樣4-6 μl。過多的上樣量可能導(dǎo)致條帶相互擠壓，分散不充分，跑不開，影響條帶分離效果。
● 使用本產(chǎn)品進(jìn)行定量分析時(shí)，可將目的片段做梯度上樣，選擇亮度與Marker條帶最為接近的片段進(jìn)行分析。

● 進(jìn)行PAGE膠電泳分析時(shí)，建議取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀釋到適當(dāng)體積上樣。

Q&a

●  對(duì)于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產(chǎn)品中只有Lambda DNA Marker為質(zhì)粒酶切產(chǎn)物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產(chǎn)品均不需點(diǎn)樣前加熱處理；另外電壓太高也會(huì)使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當(dāng)DNA停留在凝膠點(diǎn)樣孔處時(shí)該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點(diǎn)樣孔是否高質(zhì)，確保電泳的正負(fù)極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進(jìn)行PCR產(chǎn)物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結(jié)合蛋白或其他可與DNA結(jié)合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類或濃度不合適，質(zhì)量不佳；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不足，有核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時(shí)拍照。

●  為什么定量數(shù)據(jù)不正確以及如何準(zhǔn)確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會(huì)干擾凝膠定量結(jié)果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調(diào)整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標(biāo)準(zhǔn)DNA條帶，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時(shí)以分子量最接近的標(biāo)準(zhǔn)條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對(duì)DNA進(jìn)行準(zhǔn)確定量，比目測(cè)條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時(shí)會(huì)出現(xiàn)雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會(huì)產(chǎn)生非正常帶型，即出現(xiàn)所謂的雜帶。這種出現(xiàn)異型帶的現(xiàn)象，在100 bp以下的條帶極易發(fā)生。當(dāng)您的實(shí)驗(yàn)不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進(jìn)行電泳時(shí)，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進(jìn)行變性處理后上樣，以消除二級(jí)結(jié)構(gòu)。